Ingeniería de calidad para la fase pre-cría de cachama (Piaractus brachypomus) utilizando el diseño ortogonal L8
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Resumen
El estudio realizado en la estación acuícola Aquamazonía en Putumayo, Colombia, evaluó Las variables de respuesta, incremento de peso (IP), conversión alimenticia (CA) y el porcentaje de sobrevivencia (%S), en el proceso de pre cría de cachama Piaractus brachypomus. Se utilizó el diseño ortogonal L8 de Taguchi, considerando factores de control a dos niveles, incluyendo densidad de siembra (A), tasa de alimentación (B), frecuencia alimentaria (C) y nivel de proteína del alimento (CD), así como un factor de ruido (periodo de cultivo) y la interacción AD. Los resultados revelaron mejoras en los estándares productivos al identificar la combinación óptima de niveles de los factores A2, B1, C1, D2, logrando reducir la conversión alimenticia a 0.75:1, aumentar el incremento de peso a 4.63 g/periodo y alcanzar un 93.33% de sobrevivencia, superando el nivel histórico de la estación. Se destacó la influencia de la interacción entre los factores de control A y D en las variables de respuesta. La aplicación de esta combinación óptima en el ciclo de producción fase de pre-cría demostró ingresos de $21,267,659, superando los $18,300,422 generados con los niveles actuales de producción. Este estudio proporciona un enfoque práctico para optimizar la rentabilidad en la acuicultura de cachama blanca. acuicultura de cachama blanca.
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Citas
Brú-Cordero, S. B., Pertúz-Buelvas, V., Ayazo-Genes, J., Atencio-García, V. J., & Pardo-Carrasco, S. (2017). Bicultivo de cachama blanca (Piaractus brachypomus) y tilapia nilótica (Oreochromis niloticus) en biofloc alimentadas con dietas de origen vegetal. Revista de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, 64(1), 44–60. https://doi.org/10.15446/rfmvz.v64n1.65824
Chaverra, S., García, J., & Pardo, S. (2017). Biofloc effect on juveniles cachama blanca (Piaractus brachypomus) growth parameters. Medicina Veterinaria y Zootecnia, 12(4), 170–180.
Estruch, G., Martínez-Llorens, S., Tomás-Vidal, A., Monge-Ortiz, R., Jover-Cerdá, M., Brown, P. B., & Peñaranda, D. S. (2020). Impact of high dietary plant protein with or without marine ingredients in gut mucosa proteome of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Journal of Proteomics, 216, 103672. https://doi.org/10.1016/j.jprot.2020.103672
FAO. (2022). El estado mundial de la pesca y la acuicultura 2022: Hacia la transformación azul. FAO. https://doi.org/10.4060/cc0463es
Fernández, Y. R., De, O., & Rivadeneira, C. (2019). Mejora del proceso de cultivo de especies acuícolas en la empresa pesquera de Sancti Spíritus. 46, 21–33.
Hernández-Valencia, M. (2022). Revisión bibliográfica de la producción intensiva de tilapia roja (Oreochromis sp) en Colombia. https://repository.ucc.edu.co/bitstream/20.500.12494/35459/1/2021_revision_bibliografica_produccion.pdf
Jiang, X., Yao, W., Yang, H., Tan, S., Leng, X., & Li, X. (2021). Dietary effects of Clostridium autoethanogenum protein substituting fish meal on growth, intestinal histology and immunity of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) based on transcriptome analysis. Fish and Shellfish Immunology, 119, 635–644. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2021.10.005
Mancilla, Q., Paola, M., Santamaría, M. N., Jacinto, I., & Domingo, S. (2021). Evaluación de cuatro densidades de tilapia roja (Oreochromis sp) durante la etapa de alevinaje mediante la técnica de acuaponía. http://repositorio.espe.edu.ec/bitstream/21000/24117/1/T-ESPESD-003104.pdf
Messina, C. M., Madia, M., Manuguerra, S., Espinosa-Ruiz, C., Esteban, M. A., & Santulli, A. (2023). Dietary inclusion of Halobacterium salinarum modulates growth performances and immune responses in farmed gilthead seabream (Sparus aurata L.). Animals, 13(17). https://doi.org/10.3390/ani13172743
Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. (2021). Acuicultura en Colombia. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP). https://www.aunap.gov.co/images/convenio/presentacion-tecnica-acuicultura-en-colombia.pdf
Moreno Marcial, P. E., & Santos Méndez, M. M. (2022). Optimización de procesos de producción en medianas empresas del sector textil. Reciamuc, 6(1), 226–234. https://doi.org/10.26820/reciamuc/6.(1).enero.2022.226-234
Naranjo Palacios, F., Ríos Lira, A. J., Pantoja Pacheco, Y. V., & Tapia Esquivias, M. (2020). Diseños ortogonales de Taguchi fraccionados. Ingeniería Investigación y Tecnología, 21(2), 1–12. https://doi.org/10.22201/fi.25940732e.2020.21n2.011
Perea Román, C., Garcés-Caicedo, Y., Morales-Bravo, Y., Jiménez-Chamorro, M., Hoyos-Concha, J., & Vivas-Quila, N. (2021). Digestibilidad de hidrolizados enzimáticos de vísceras de origen animal en Piaractus brachypomus (Cuvier, 1818). Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial, 20(1), 16.
Sarmiento, E., Zabaleta, E., Rodríguez, E., & Pérez, O. (2021). Producción de policultivos de tilapia roja y cachama en el departamento del Meta bajo implementación de la norma NTC 5700. https://repository.uniminuto.edu/handle/10656/12551
Torres-Mesa, A. C., Tovar-Bohórquez, M. O., Hurtado-Giraldo, H., & Gómez-Ramírez, E. (2015). Excreción de nitrógeno amoniacal total a diferentes densidades de siembra de Cyprinus carpio en condiciones de laboratorio. Orinoquia, 19(1), 19. https://doi.org/10.22579/20112629.311
Velasco-Santamaría, Y., Palacios-Ruiz, C., & Cruz-Casallas, P. (2008). Eficiencia anestésica de 2-fenoxietanol, benzocaína, quinaldina y metasulfonato de tricaina en alevinos y juveniles de cachama blanca (Piaractus brachypomus). Revista MVZ Córdoba, 13(3), 1435–1445. https://doi.org/10.21897/rmvz.374
Wu, Y., & Wu, A. (1997). Diseño robusto utilizando los métodos Taguchi. Díaz de Santos.